El doctor Limbert Rojas, jefe del laboratorio de patología de ADA, explicó que pequeños errores en campo pueden alterar los resultados de las pruebas serológicas
La correcta colecta de muestras sanguíneas en pollos es un procedimiento que, aunque a simple vista parece sencillo, demanda precisión, cuidado y conocimiento técnico para garantizar resultados confiables en los análisis de laboratorio. De acuerdo con el doctor Limbert Rojas, jefe del laboratorio de patología de la Asociación Departamental de Avicultores (ADA), existen pequeños detalles que pueden marcar una gran diferencia entre obtener una muestra útil o una que arroje resultados erróneos y poco representativos.
“Son aspectos bastante fáciles de realizar, pero cuando se entra en el terreno técnico, hay pequeños puntos que si no se ejecutan correctamente en campo pueden interferir en los resultados de las muestras”, explicó Rojas, destacando que una mala técnica de colecta puede alterar la interpretación de los títulos de anticuerpos o incluso generar falsos negativos en las pruebas serológicas, como las Elisa.
En este sentido, el especialista detalla una serie de aspectos fundamentales que deben tener en cuenta los técnicos, veterinarios y productores al momento de realizar la colecta de sangre en aves:
Aspectos importantes para la correcta colecta de muestras sanguíneas en pollos
- Selección del ave adecuada
Es esencial elegir aves representativas del lote, que estén clínicamente sanas y no presenten signos de estrés o enfermedad. Además, se debe evitar muestrear aves recién vacunadas, ya que es importante esperar el tiempo adecuado post-vacunación para obtener resultados válidos según la prueba que se realizará. - Identificación y registro
Cada muestra debe estar debidamente identificada, incluyendo el número del ave, lote, granja, fecha, edad y tipo de vacuna aplicada. Un registro inadecuado puede invalidar los resultados o dificultar su correcta interpretación. - Sitio de punción
El sitio más comúnmente utilizado en pollos es la vena braquial o cutánea ulnar, ubicada en el ala. También puede usarse la vena yugular, aunque este método requiere mayor experiencia y control del ave para evitar lesiones. - Materiales y manipulación
Se deben utilizar jeringas y agujas estériles, preferiblemente de calibre 23G a 25G. Es importante evitar la hemólisis (ruptura de glóbulos rojos) aspirando la sangre suavemente. La muestra debe colocarse en tubos sin anticoagulante cuando se desea obtener suero. - Separación del suero
La muestra debe dejarse coagular entre 30 y 60 minutos a temperatura ambiente. Luego se debe centrifugar o dejar decantar para obtener el suero limpio, evitando mezclar restos del coágulo, lo cual podría alterar el resultado final. - Conservación y transporte
Las muestras deben mantenerse refrigeradas entre 2 y 8 °C hasta su envío al laboratorio. En caso de demoras prolongadas, se recomienda congelar el suero y trasladarlo en condiciones que aseguren la cadena de frío.
El doctor Rojas destacó que uno de los factores más determinantes para obtener un diagnóstico confiable es el número de muestras recolectadas.
“Las pruebas es ideal realizarlas luego de aplicar la vacuna y revisar la vacunación. Dependiendo del tipo de vacuna, esto puede ser a las tres o cinco semanas, puede tratarse de una vacuna viva, inactivada, oleosa o vectorizada; cada una tiene sus especificaciones”
“Se han estado enviando muestras en pocas cantidades, lo cual repercute en el diagnóstico final. Mientras mayor número de muestras, mejor resultado. Y además, mantener la calidad de las muestras: una muestra de calidad va a dar, por ende, un mejor resultado de calidad y una interpretación de calidad”, puntualizó.
Asimismo, recomendó que los productores dejen la mayor cantidad de información posible sobre el lote del cual se ha tomado la muestra. Una vez que las muestras llegan al laboratorio, el equipo técnico realiza todos los análisis y en un tiempo prudente entrega los resultados, que permiten definir acciones correctivas, como revacunaciones en caso de detectarse títulos bajos de anticuerpos.
Según el especialista, el número de individuos muestreados tiene una relación directa con la representatividad de los resultados, por lo que recomienda colectar entre 15 y 20 muestras por lote para obtener un panorama más preciso de la respuesta inmunológica del grupo.
Técnicas y herramientas para la toma de la muestra
El doctor Rojas enfatizó que el personal encargado de la toma de muestras debe estar bien entrenado, desde la correcta sujeción del ave hasta la manipulación del material de laboratorio.
Las jeringas y tubos deben ser estériles, y pueden solicitarse directamente al laboratorio de ADA para asegurar la calidad del material.
“Las jeringas son desechables, una para cada ave, y se debe llevar la cantidad suficiente para evitar reutilizar”, explicó.
Una vez colectada la sangre, se debe retirar la aguja antes de vaciarla en el tubo, con el fin de evitar la hemólisis del suero. Posteriormente, se tapa el tubo y se mantiene en refrigeración hasta su entrega al laboratorio.
En cuanto a los tiempos de análisis, Rojas recomendó realizar las pruebas luego de la aplicación de la vacuna, siguiendo los intervalos adecuados según el tipo de inmunización.
“Las pruebas es ideal realizarlas luego de aplicar la vacuna y revisar la vacunación. Dependiendo del tipo de vacuna, esto puede ser a las tres o cinco semanas, puede tratarse de una vacuna viva, inactivada, oleosa o vectorizada; cada una tiene sus especificaciones”, precisó.
Finalmente, el jefe del laboratorio de ADA subrayó que este proceso permite evaluar de forma precisa la efectividad de los programas vacunales.
“Esto da un parámetro específico de qué hacer si tenemos una baja cobertura vacunal, es decir, una poca respuesta. Tendríamos que hacer una nueva vacunación; esto permitiría a los productores minimizar el riesgo de ingreso de la enfermedad o de los patógenos”, concluyó Rojas.
Fuente: Limberg Rojas
Redacción: Publiagro
